白色菌子能放多久,白色的菌子养殖
白色的菌落
是菌类。
霉菌的菌落和放线菌一样也是由分枝状菌丝组成。因菌丝较粗而长,形成的菌落较疏松,呈绒毛状、絮状或蜘蛛网状,一般比细菌菌落大几倍到几十倍。有些霉菌,如根霉、毛霉、链孢霉生长很快,菌丝在固体培养基表面蔓延,以至菌落没有固定大小 。有的霉菌菌落生长则有一定的局限性,直径1-2cm 或更小。菌落表面常呈现出肉眼可见的不同结构和色泽特征,这是因为霉菌形成的孢子有不同形状、构造和颜色,有的水溶性色素可分泌到培养基中,使菌落背面呈现不同颜色;一般处于菌落中心的菌丝菌龄较大,位于边缘的则较年幼。菌落具有“霉味”。同一种霉菌,在不同成分培养基上的菌落特征可能有变化。但各种霉菌,在同一培养基上的菌落形状、颜色等相对稳定 栽培环境太潮湿、阴暗,且介质中含有机物就有可能长出霉菌。只要将盆栽移至日照充足且通风处,并减少浇水,土干了再浇,应该会有所改善。换掉不干净土壤 如果培养土中留存有一些杂菌,就容易长出菌类或霉菌,应停用并更换培养土,或在阳光下曝晒进行杀菌。停用未完全发酵有机肥 若使用未完全发酵的有机肥,会让有机肥内的菌类在培养土中持续生长。可将有机肥堆置,等到发酵完全后再使用。
白色的菌落是什么菌
蓝白斑筛选的原理 分类:生物科学蓝白斑筛选是重组子筛选的一种方法: 是根据载体的遗传特征筛选重组子,如α-互补、抗生素基因等。
现在使用的许多载体都带有一个大肠杆菌的DNA的短区段,其中有β-半乳糖苷酶基因(lacZ)的调控序列和前146个氨基酸的编码信息。
在这个编码区中插入了一个多克隆位点(MCS),它并不破坏读框,但可使少数几个氨基酸插入到β-半乳糖苷酶的氨基端而不影响功能,这种载体适用于可编码β-半乳糖苷酶C端部分序列的宿主细胞。
因此,宿主和质粒编码的片段虽都没有酶活性,但它们同时存在时,可形成具有酶学活性的蛋白质。
这样,lacZ基因在缺少近操纵基因区段的宿主细胞与带有完整近操纵基因区段的质粒之间实现了互补,称为α-互补。
由α-互补而产生的LacZ+细菌在诱导剂IPTG的作用下,在生色底物X-Gal存在时产生蓝色菌落,因而易于识别。
然而,当外源DNA插入到质粒的多克隆位点后,几乎不可避免地导致无α-互补能力的氨基端片段,使得带有重组质粒的细菌形成白色菌落。
这种重组子的筛选,又称为蓝白斑筛选。
如用蓝白斑筛选则经连接产物转化的钙化菌平板37℃温箱倒置培养12-16hr后,有重组质粒的细菌形成白色菌落。
白色的菌落出现的原理
LacZ阳性显色为深蓝色,其染色的部位为目的基因敲掉的部位,因此是报告基因的定位。
LacZ基因广泛用于基因表达调控研究中的一种基因。1969年,美国哈佛大学以Beckwith博士为首的研究小组,套用DNA分子杂交技术首次分离到该基因.LacZ基因编码的β一半乳糖苷酶(简称β-gal)是由4个亚基组成的四聚体,可催化乳糖的水解.
Beta-gal比较稳定,用X-Gal为底物进行染色时,呈蓝色,便于检测和观察.LacZ基因的诸多优点使它成为基因工程实验中的一个常用标记基因,比如常用于转化菌株筛选,β-半乳糖苷酶显色反应选择法,即,蓝白筛选.例如,基因克隆中常用的质粒载体PUC 19及噬菌体载体M13系列均带有LacZ基因.
白色的菌落是什么
金黄色葡萄球菌与白葡萄球菌是同一个属的,都属于革兰氏阳性球菌,细菌培养时,这两种菌产生的色素不同,一个产生金黄色菌落,叫金葡菌,而白葡萄球菌产生白色菌落,金黄色葡萄球菌会产生凝固酶,所以此菌是致病菌,感染会更严重,而白葡萄球菌是属于条件致病菌。
白色的菌落是什么细菌
白色,细菌菌落,菌落比较小;表面或光滑粘稠,或粗糙干燥;常呈白色或黄色。属于真菌菌落,常呈绒毛状、絮状、或蜘蛛网状,有的还呈现红色、褐色、绿色、黑色等颜色。包括霉菌菌落,一般比细菌菌落大几倍或几十倍。
细菌菌落一般呈凝胶状、表面较光滑、湿润、与培养基结合不紧密, 易挑取,颜色一致。
白色的菌落是细菌还是真菌
菌落意思是指一个细菌或真菌繁殖后形成肉眼可见的集合体。
白色的菌落是什么菌种
1835年,美国巴西(AgostinoBassi)首次发现白僵菌是引起家蚕白僵病的病原。真菌门,半知菌亚门,丛梗孢科。菌落平坦,绒毛状,形成孢子后呈粉状,表面白色至淡黄色。分生孢子梗瓶状,单生或分枝,产生在小梗上,球形至卵形。
物化性质
化学性质 白色至灰色粉状物。依靠孢子随风扩散,能侵染和寄生松毛虫等多种昆虫虫体,使其得病死亡。属好气性菌,生长发育过程需足够氧,中性或微酸性环境生长良好,pH值8以上不能生长,菌孢生长适宜温度24~28℃,高于50℃大量死亡,0~5℃生长缓慢,甚至休眠。生长湿度90%~95%为宜。
白色的菌落是否都是真正的重组子,为什么
原位杂交是指将特定标记的已知顺序核酸为探针与细胞或组织切片中核酸进行杂交,从而对特定核酸顺序进行精确定量定位的过程。原位杂交可以在细胞标本或组织标本上进行。
另有荧光原位杂交。
中文名:原位杂交
外文名:in situ hybridization
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基本定义
原位杂交(in situ hybridization)
将标记的核酸探针与细胞或组织中的核酸进行杂交,称为原位杂交。
使用DNA或者RNA探针来检测与其互补的另一条链在细菌或其他真核细胞中的位置。
RNA原位核酸杂交又称RNA原位杂交组织化学或RNA原位杂交。该技术是指运用cRNA或寡核苷酸等探针检测细胞和组织内RNA表达的一种原位杂交技术。其基本原理是:在细胞或组织结构保持不变的条件下,用标记的已知的RNA核苷酸片段,按核酸杂交中碱基配对原则,与待测细胞或组织中相应的基因片段相结合(杂交),所形成的杂交体 (Hybrids)经显色反应后在光学显微镜或电子显微镜下观察其细胞内相应的mRNA、rRNA和tRNA分子。RNA原位杂交技术 经不断改进,其应用的领域已远超出DNA原位杂交技术。尤其在基因分析和诊断方面能作定性、定位和定量分析,已 成为最有效的分子病理学技术,同时在分析低丰度和罕见的mRNA表达方面已展示了分子生物学的一重要方向。
FISH是原位杂交技术大家族中的一员,因其所用探针被荧光物质标记(间接或直接)而得名,该方法在80年代末 被发明,现已从实验室逐步进入临床诊断领域。基本原理是荧光标记的核酸探针在变性后与已变性的靶核酸在退火 温度下复性;通过荧光显微镜观察荧光信号可在不改变被分析对象(即维持其原位)的前提下对靶核酸进行分析。DNA荧光标记探针是其中最常用的一类核酸探针。利用此探针可对组织、细胞或染色体中的DNA进行染色体及基因水平 的分析。荧光标记探针不对环境构成污染,灵敏度能得到保障,可进行多色观察分析,因而可同时使用多个探针,缩 短因单个探针分开使用导致的周期过程和技术障碍。
例子
以菌落原位杂交为例:
对分散在若干个琼脂平板上的少数菌落(100-200)进行克隆筛选时,可采用该方法。将这些菌落归并到一个琼脂主平板以及已置于第二个琼脂平板表面的一张硝酸纤维素滤膜上。经培养一段时间后,对菌落进行原位裂解。主平板应贮存于4℃直至得到筛选结果。
将少数菌落转移到硝酸纤维素滤膜上
(1) 在含有选择性抗生素的琼脂平板上放一张硝酸纤维素滤膜。
(2) 用无菌牙签将各个菌落先转移至滤膜上,再转移至含有选择性抗生素但未放滤膜的琼脂主平板上。应按一定的格子进行划线接种(或打点)。每菌落应分别划线于两个平板的相同位置上。最后,在滤膜和主平板上同时划一个含有非重组质粒(如pBR322)的菌落。
(3) 倒置平板,于37℃培养至划线的细菌菌落生长到0.5-1.0mm的宽度。
(4) 用已装防水黑色绘图墨水的注射器针头穿透滤膜直至琼脂,在3个以上的不对称位置作标记。在主平板大致相同的位置上也作上标记。
(5) 用Parafilm膜封好主平板,倒置贮放于4℃,直至获得杂交反应的结果。
(6) 裂解细菌,按本段下面所述方法,使释放的DNA结合于硝酸纤维素滤膜。
菌落的裂解及DNA结合于硝酸纤维素滤膜
(1) 在一张保鲜膜上制作一个装有0.5mol/L NaOH的小洼(0.75ml),使菌落面朝上,将滤膜放到小洼上,展平保鲜膜,使滤膜均匀湿润,让滤膜留于原处2-3分钟。
(2) 用干纸巾从滤膜的下方吸干滤膜,用一张新的保鲜膜和新配制的0.5mol/L NaOH重复步骤(1)。
(3) 吸干滤膜,将滤膜转移到新的带有1mol/L Tris·Cl(pH7.4)的保鲜膜洼上。5分钟后吸干滤膜,再重复一次该步骤。
(4) 吸干滤膜,把它转移到有1.5mol/L NaCl、0.5mol/L Tris·Cl (pH7.4)的保鲜膜小洼上5分钟后吸干滤膜,转移到一张干的滤纸上,置于室温20-30分钟,使滤膜干燥。
(5) 将滤膜夹在两张干的滤纸之间,在真空烤箱中于80℃干烤2小时,固定DNA。
(6) 将固定在膜上的DNA与32 P标记的RNA进行杂交。
3.杂交 (1) 盛有2×SSC的塑料盘同,将干烤的滤膜飘浮在液面上,彻底浸湿5分钟。
(2) 将滤膜转到200ml预洗液的玻璃皿中。滤膜何叠在一起,放于溶液中。用保鲜膜盖住玻璃皿,放到位于培养箱内的旋转平台上。于50℃处理30分钟。在这一步及以后的所有步骤中,应缓缓摇动滤膜,防止它们粘在一起。
(3) 用泡过预洗液的吸水棉纸轻轻地从膜表面拭去细菌碎片,以降低杂交背景而不影响阳性杂交信号的强度和清晰度。
(4) 将滤膜转到盛有150ml预杂交液的玻璃中,在适宜温度(即在水溶液中杂交时用6
养兔
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